普健生物 http://kx.atagenix.cn/ 2022-05-07
在我们进行基因的表达和调控时,通常需要从组织和细胞中去分离和纯化RNA。而RNA的质量高低,直接影响到cDNA文库的完整性、qRT-PCR和Northern Blot等,最终可以说,从根本上决定实验的成与败。
那么,什么是Trizol呢?
Trizol其是就一种RNA的抽提试剂,它里面含异硫氰酸胍等物质,能够迅速地破碎细胞,并抑制细胞释放出核酸酶。
RNA酶可以说是无处不在,而且其具有难以灭活的顽固本性,所以,我们在RNA的抽提过程中需要进行严格地控制,所用的试剂耗材,必须是通过RNase-free或DEPC处理过的。
之后,我们在实验步骤的各个阶段来进行剖析。
1、样品准备
01、RNA提取
将组织块放入到研钵中,加入少量的液氮,迅速研磨,在研磨期间需不断地加入液氮,以保证研磨环境,直到研磨成粉末状。每50-100mg组织中需要加入1 ml Trizol,转入1.5 ml EP管中进行后续操作。
组织的体积一般不要超过Trizol体积的10%,用匀浆器充分匀浆,致无明显颗粒后才停下,再转入到1.5 ml EP管中进行后续操作。
02、从细胞中提取总RNA
贴壁细胞去除培养基,用无菌PBS清洗细胞的表面,加入1 ml Trizol,用带滤芯的RNase-free枪头反复吹打细胞,将收集到的样品置于RNase-free的离心管中,再-80℃环境下保存待用。
悬浮细胞收集细胞悬液,1000×g离心5 min,用适量的无菌PBS清洗细胞,1000×g离心5 min弃上清,沉淀加入1 ml Trizol,用带滤芯的RNase-free枪头反复吹打细胞,将收集的样品置于RNase-free的离心管中,冻存在-80℃冰箱备用。
03、从细菌中提取总RNA
对于细菌或蛋白质、脂肪、多糖或细胞外基质含量高的样品,还需要进行额外地分离。加入Trizol吹打混匀后,4℃,12000×g,离心10 min。将上清转移至新的RNase-free的离心管中,存在-80℃冰箱备用。
2、RNA提取
01、将冻存的RNA样本取出并在冰上解冻。
02、每管样本中都加入200 µl RNA专用的三氯甲烷(每毫升Trizol加200 µl),振荡器震荡1 min后,并在冰上静置5 min。
03、4℃,12000×g,离心10 min。
04、此时液体分三层,将上层的水相转移到另一个RNase-free的离心管中。
05、加入等体积的-20℃预冷的RNA专用的异丙醇,上下颠倒混匀,于-20℃静置15 min以上。
06、4℃,12000×g,离心15 min,小心弃上清。
07、加入1 ml预冷的75%的乙醇(25% DEPC无菌水,75% RNA专用无水乙醇)涡旋混匀。
08、4℃,7500×g,离心10 min,尽量去除离心管中的残液,然后在无菌操作台中风干约10 min(注意不要过度干燥,否则难以溶解)。
09、每个离心管中加入适量的RNase-free的ddH2O溶解沉淀,用枪头吸打混匀,至完全溶解。离心几秒,让离心管中的液体全部在管底,然后置于冰上。
010、去除杂质DNA:
011、琼脂糖电泳检测RNA的完整性:建议使用DEPC处理的ddH2O配置1.2%琼脂糖凝胶,DEPC处理的ddH2O稀释TAE缓冲液。
*完整的RNA经凝胶电泳后会明显地观察到28S和18S两条带,并且28S的条带亮度约是18S的两倍。若两条条带不明显,则提示RNA可能部分降解。
*提取的RNA可用于后续操作,如需用qRT-PCR检测基因表达,为避免RNA降解,建议提完RNA后立即将RNA逆转录成cDNA进行保存,cDNA可在-20℃长期保存。
实验步骤就是这样,
但任何一步出现的问题
都可能让你的实验停滞不前。
所以,我们还需要了解:
常见问题及解决办法
01、RNA的各种吸光度代表什么?
260 nm、230 nm、280 nm下的吸光度分别代表了核酸、盐浓度和蛋白质等有机物的吸光度值。OD260/OD280(R)体现了RNA中蛋白质等有机物的污染程度,质量较好的RNA的R值应在1.8-2.2之间。当R<1.8时,说明溶液中的蛋白质等有机物的污染比较明显;当R>2.2时,说明RNA已经被水解成了单核苷酸。
02、RNA提取量低怎么办?
① 加大起始的样本量。
② 向组织或细胞中加入Trizol之后,充分吹吸使样本充分裂解。
③ 加入三氯甲烷分层后,尽量完全回收上清。
03、提取的RNA不溶怎么办?
① 75%乙醇清洗沉淀后干燥时间不要过长。
② 可以于60℃加热5 min后再冰上溶解数小时。
③ RNA沉淀中含有不溶的蛋白质混合物时,应注意在相分离后吸取上清时,避免枪头接触蛋白层。